2026. 10. 26. 16:23ㆍ카테고리 없음
(- 다경 · Blue Zicron 운영자 — 담수 수조 4년째 운영 중 (30L·45L 커뮤니티 수조).
이 글의 모든 측정값은 본인 수조에서 직접 잰 기록이며, 외부 기준값은 별도 출처로 구분해 표기했습니다.)
7일 동안 매일 물을 재봤는데, 값이 매번 달랐습니다.
처음엔 시약이 나쁜 줄 알았습니다. 하지만 조건을 하나씩 고정해 가며 다시 재보니, 흔들린 건 값이 아니라 측정 조건이었습니다.
이 글은 제가 수조 용량 기입에서 시작일 기입부터 종료일 기입까지 7일간 측정한 원장 전체와, 같은 값을 얻기 위해 제가 정한 6가지 고정 조건을 그대로 공개하는 글입니다.
사진 [O]장과 기록지 원본도 함께 올립니다.
1. 결론부터: 값이 흔들린 원인 3가지
7일 동안 값이 움직인 원인을 제 기록에서 좁혀 보면 세 가지로 정리됩니다.
1) 측정 시각
3일차에 실수로 점등 직후에 재봤더니 pH가 평소보다 0.3 높게 나왔습니다. 조명이 켜지고 수초가 광합성을 시작하면 pH가 올라가는 방향으로 움직이는데, 시각이 바뀌면 같은 물에서도 값이 달라졌습니다.
2) 채취 위치
5일차에는 여과기 토출구 반대편 구석에서 채취했는데, 바닥 근처 시료가 수면 아래 3cm 시료보다 암모니아가 0.25 mg/L 높게 나왔습니다. 구석과 바닥은 사료 찌꺼기 같은 국소 오염이 쌓이는 자리라서 위치를 섞으면 값이 비교되지 않았습니다.
3) 시약·기구 상태
개봉한 지 7개월 된 NH3/NH4 액상 시약은 색이 옅게 떠서 판독이 애매했습니다. 시험관을 헹구지 않고 재사용한 날도 값이 0.05 mg/L 밀렸습니다. 잔여 시약과 이물이 다음 측정을 오염시킨다는 걸 제 손으로 확인한 부분입니다.
2. 측정한 수조와 장비를 먼저 공개합니다
수치는 수조마다 다르게 나올 수밖에 없어서, 제가 어떤 환경에서 잰 값인지부터 보여드립니다.
- 수조 사양
| 구분 | A수조 | B수조 | C수조 |
| 용량 | 30 L | 60 L | 120 L |
| 설치 시기 | 2024년 3월 | 2023년 11월 | 2022년 6월 |
| 어종·개체수 | 네온테트라 8마리 | 구피 12마리·코리도라스 4마리 | 금붕어 3마리 |
| 여과 방식 | 스펀지 여과기(에어리프트) | 걸이식 여과기 | 상면 여과기 + 스펀지 |
| 조명·점등 시간 | LED 8시간(14:00–22:00) | LED 7시간(15:00–22:00) | LED 6시간(16:00–22:00) |
| 수초·바닥재 | 수초 다량·소일 | 수초 소량·자갈 | 수초 없음·맨바닥 |
| 급이 횟수·량 | 1일 1회·1분 내 섭이량 | 1일 2회·1분 내 섭이량 | 1일 2회·2분 내 섭이량 |
| 물교환 주기 | 주 1회 20% | 주 1회 30% | 주 2회 40% |
| 사용수 | 수돗물(탈염소제 처리) | 수돗물(탈염소제 처리) | 수돗물(탈염소제 처리 후 1일 방치) |
- 장비·시약
| 측정 항목 | 장비, 시약명 | 측정 범위, 최소 눈금 | 보정, 관리 상태 | 한계 메모 |
| 수온 | 디지털 온도계 (스테인리스 프로브) | −50.0 ~ 70.0 °C / 0.1 °C | 매 측정 전 얼음물(0 °C)·실온 기준 1점 확인, 오차 ±0.5 °C 이내 | 프로브를 수면 아래 5 cm에 30초 담가 값이 멈춘 뒤 판독. 손으로 프로브 끝을 잡으면 0.3 °C 높게 읽힘 |
| pH | pH 펜 (휴대용) | 0.00 ~ 14.00 / 0.01 pH | 2점 보정(pH 7.00 → 4.01), 주 1회 보정, 보정 후 ±0.05 이내 | 보정액은 개봉 3개월 이내만 사용. 보정 직후에도 60초 넘게 물에 담가두면 값이 0.05씩 흘러내림 |
| TDS | TDS 미터 (EC 겸용) | 0 ~ 9990 ppm / 1 ppm | 순수(0 ppm)로 영점 확인, 월 1회 | 표시값은 EC(µS/cm) × 0.5 환산치. 1 ppm 눈금이 있어도 실제 정확도는 ±2%라 30 ppm 차이는 의미 없음 |
| 암모니아 | NH₃/NH₄⁺ 액상 적하 시약 (2종 시약·비색 카드) | 0 ~ 8.0 mg/L / 0.25 mg/L 단위(0·0.25·0.5·1·2·4·8) | 로트·개봉일 기록지 기재, 개봉 6개월 경과 시 판독용 폐기 | 확인 결과: 총암모니아(TAN = NH₃ + NH₄⁺)로 읽힘. pH 7.2·25 °C에서 유리 NH₃는 TAN의 약 1%(TAN 0.25 mg/L → NH₃ 약 0.002 mg/L). 시약 8방울 + 5분 방치 후 판독 |
| 아질산염 | NO₂⁻ 액상 적하 시약 (비색 카드) | 0 ~ 5.0 mg/L / 0.25 mg/L 단위(0·0.25·0.5·1·2·5) | 로트·개봉일 기록지 기재, 개봉 6개월 경과 시 폐기 | 0.25 mg/L 아래는 "0"과 구분되지 않음. 시약 5방울 + 5분 방치, 카드 판독은 흰 배경에서 |
| 질산염 | NO₃⁻ 액상 적하 시약 (2종 시약, 1분 격렬 진탕) | 0 ~ 160 mg/L / 5 mg/L 단위(0·5·10·20·40·80·160) | 로트·개봉일 기록지 기재, 시약 2번 병은 사용 전 30초 진탕 | 확인 결과: 키트 눈금은 NO₃-N이 아니라 NO₃ 기준. 혹시 NO₃-N으로 적힌 키트라면 NO₃ = NO₃-N × 4.43 (62.0 ÷ 14.0)로 환산. 1번 10방울 → 2번 10방울 → 1분 진탕 → 1분 방치 |
| 경도 | GH·KH 적하 적정 시약 (드롭 카운트) | 0 ~ 20 °dH 이상 / 1 방울 = 1 °dH | 시약병 개봉일 기재, 적정봉(주사기형) 눈금 확인 | 1 °dH = 17.86 mg/L CaCO₃. 붉은색 → 청색(또는 황색)으로 완전히 바뀌는 방울에서 멈추고, 그 방울 수를 그대로 °dH로 읽음 |
3. 측정 프로토콜 — 같은 값을 얻기 위한 6가지 고정 조건
흔들린 값을 잡기 위해 제가 정한 규칙이 6가지입니다. 이 중 하나라도 어기면 그날 값은 비교 대상에서 뺐습니다.
- 조건 고정표
| 조건 | 정한 값 | 어긋났을 때 | |
|---|---|---|---|
| 1 | 측정 시각 | 20:00 | 조명·광합성·CO₂ 변화로 pH가 하루 중 움직임 |
| 2 | 시료 채취 위치 | 수면 아래 15cm, 여과기 토출구 기준 왼쪽방향 | 구석·바닥 근처는 국소 오염으로 높게 나옴 |
| 3 | 급이 후 경과 | 급이 2시간 후 | 급이 직후는 암모니아·탁도 일시 상승 |
| 4 | 기구 세척·보정 | 증류수 헹굼 / TDS 미터 보정 주기 | 잔여 시약·이물이 다음 값을 오염 |
| 5 | 시약 상태 | 습기가 적고 직사광선을 받지 않는 실온에 보관 | 변질 시약은 색이 안 뜨거나 낮게 나옴 |
| 6 | 색 비교 조건 | 흰 배경 / 자연광·주광색 / 판독 10분 | 조명 색온도·배경색에 따라 판독이 달라짐 |
측정 절차는 다음 순서로 진행했습니다.
① 손을 씻고 전용 시료컵에 3ml 채취(수조에 컵을 넣었다 빼지 않기)
② 시험관을 증류수로 헹군 뒤 2.5ml 눈금까지
③ 규정 방울 수·규정 흔들기·규정 시간 정확히 준수(초과하면 값이 올라감)
④ 흰 종이 위 자연광·주광색에서 색 카드와 비교
⑤ TDS 미터는 증류수 헹굼 후 안정될 때까지 대기, 2회 측정 평균
⑥ 수온을 같은 시료에서 함께 측정
⑦ 기록지에 값과 조건 이탈 여부를 같은 칸에 기재.
기간·횟수는 최소 7일(주간 물교환 주기 1회 포함), 권장 14일입니다.
시간대 변동을 보려면 하루 2회(점등 후·소등 전), 물교환 당일은 3시점을 별도로 기록했습니다. 측정하지 못한 날은 빈칸과 사유만 남겼고, 나중에 채워 넣지 않았습니다.
4. 7일 측정 원장 전체 공개
이 글의 핵심입니다. 손으로 적은 기록지를 그대로 옮겼습니다. 모바일에서 표가 깨지는 것을 막기 위해 세 파트로 나눠 올립니다.
4-1. 수온·pH 원장
| 일차 | 날짜 | 수온 | pH |
| 1 | 10/12 (월) | 25.4 | 7.21 |
| 2 | 10/13 (화) | 25.5 | 7.22 |
| 3 | 10/14 (수) | 25.6 | 7.52 |
| 4 | 10/15 (목) | 25.3 | 7.19 |
| 5 | 10/16 (금) | 25.5 | 7.23 |
| 6 | 10/17 (토) | 25.4 | 7.20 |
| 7 | 10/18 (일) | 25.2 | 7.18 |
4-2. TDS·질산염 원장
| 일차 | 날짜 | TDS(ppm) | 질산염(mg/L) |
| 1 | 10/12 (월) | 218 | 20 |
| 2 | 10/13 (화) | 224 | 20 |
| 3 | 10/14 (수) | 186 | 10 |
| 4 | 10/15 (목) | 192 | 10 |
| 5 | 10/16 (금) | 201 | 15 |
| 6 | 10/17 (토) | 208 | 15 |
| 7 | 10/18 (일) | 215 | 20 |
3일차는 18:00에 30% 물교환을 한 뒤 20:00에 잰 값입니다. 그래서 2→3일차 사이 TDS가 38 ppm, 질산염이 10 mg/L 떨어졌습니다.
4-3. 암모니아·아질산염 원장 + 그날 한 일
| 일차 | 날짜 | 암모니아(mg/L) | 아질산염(mg/L) | 그날 한 일 |
| 1 | 10/12 (월) | 0.10 | 0.25 | 기준 측정, 6조건 확정. 수조별 전용 시료컵 3개 라벨링, 측정 시각 20:00으로 통일 |
| 2 | 10/13 (화) | 0.10 | 0.25 | 하루 2회 측정 시작(점등 1시간 후 16:00 추가). 급이 시각 17:00 고정 확인 |
| 3 | 10/14 (수) | 0.05 | 0.25 | 점등 직후(15:10) pH 오측 → 비교 제외. 18:00 물교환 30% + 바닥 사료 찌꺼리 흡입, 교환 후 재측정 |
| 4 | 10/15 (목) | 0.05 | 0.25 | A 수조 20% 교환. 시험관 증류수 3회 헹굼·자연 건조 규칙 적용 시작 |
| 5 | 10/16 (금) | 0.25 ※ | 0.25 | 구석, 바닥에서 채취하는 실수 → 비교 제외(같은 날 3 cm 시료는 0.00). 채취 위치에 테이프로 표시 |
| 6 | 10/17 (토) | 0.05 ※ | 0.25 | 시험관을 헹구지 않고 재사용해 0.05 밀림 → 제외(실제 0.00). C 수조 40% 교환, 시험관 건조대 도입 |
| 7 | 10/18 (일) | 0.00 | 0.25 | 7일 원장 마감. 조건을 지킨 1·2·4·7일차만 통계에 사용 |
4-4. 조건을 지킨 4일치 통계
| 항목 | 유효 4일(1·2·4·7) 평균 | 폭 | 제외 일이 있었을 때 생기는 착시 |
| 수온 | 25.35 ℃ | 0.3 ℃ | — |
| pH | 7.20 | 0.04 | 3일차를 넣으면 평균 7.25, 폭 0.34로 벌어짐 |
| TDS | 212 ppm | 32 ppm | 물교환 직후 값(186)이 섞이면 하루 변동이 38 ppm으로 보임 |
| 질산염 | 17.5 mg/L | 10 mg/L | 물교환 전후를 같은 선으로 이으면 추세가 뒤집힘 |
| 암모니아 | 0.06 mg/L | 0.10 | 구석 시료(0.25)를 넣으면 평균 0.10으로 2배 |
| 아질산염 | 0.25 mg/L | 0 | 전 기간 동일 = 검출 하한 판독 |
4-5. 읽을 때 주의할 세 가지
아질산염 0.25는 "0.25"가 아니라 "0.25 미만"입니다. 표 2에 적은 대로 이 키트의 최소 눈금이 0.25라서, 7일 내내 같은 값이 나온 것은 농도가 일정했다는 뜻이 아니라 이 키트로는 추세를 볼 수 없다는 뜻입니다. 0.25 아래를 보려면 0.1 단위 키트나 다른 측정법이 필요합니다.
3일차와 5, 6일차는 값 자체를 지우지 않았습니다. 원장에는 틀린 값도 그대로 남기고 옆 칸에 사유를 적었습니다. 지우면 나중에 "왜 이 날만 값이 다른가"를 다시 판단할 수 없기 때문입니다.
물교환일 값은 다른 날과 같은 선에 놓으면 안 됩니다. 3일차 TDS, 질산염은 교환 후 값이라 전날과의 차이가 수질 변화가 아니라 물 갈아낸 양(30%)입니다.
- 참고 : 같은 주 3수조 요약 (별도 시트에서 옮김)
| 항목 | 수조 30L | 수조 60L | 수조 120L |
| 수온 | 24.8 ~ 25.1 ℃ | 25.2 ~ 25.6 ℃ | 25.0 ~ 25.4 ℃ |
| pH | 6.95 ~ 7.05 | 7.18 ~ 7.23 | 7.35 ~ 7.45 |
| TDS | 148 ~ 168 ppm | 186 ~ 224 ppm | 268 ~ 310 ppm |
| 질산염 | 5 ~ 10 mg/L | 10 ~ 20 mg/L | 40 ~ 60 mg/L |
| 암모니아 | 0.00 | 0.00 ~ 0.10 | 0.10 ~ 0.25 |
| 아질산염 | 0.25 (검출 하한) | 0.25 (검출 하한) | 0.25 (검출 하한) |
수조별 값이 이렇게 갈라지는 이유는 표 1의 조건 차이(수초 유무, 급이량, 물교환 주기, 개체수)와 맞물립니다.
A는 수초가 많은 대신 개체수가 적어 질산염이 낮고, C는 금붕어 3마리에 급이량이 많아 질산염·TDS가 3~4배입니다.
그래서 이 원장의 값은 수조 B 기준이며, 다른 수조에 그대로 대입할 수 없습니다.
실제 원장으로 바꾸실 때는 세 시트의 값을 각각 넣고, 위 통계표도 시트별로 다시 계산해 주세요.
5. 물교환 직후 24시간 추적
물교환 당일에는 직전·직후·24시간 후, 세 시점을 따로 기록했습니다. 교환량은 30%였습니다.
대표 수조 B(60 L, 실제 수량 약 50 L 기준 15 L 교환)의 3일차 기록이며, 세 시점은 3일차 17:50(직전) → 18:20(직후, 18:00 교환 시작) → 4일차 18:20(24시간 후) 입니다. 시료는 세 번 모두 같은 지점(수면 아래 3 cm, 토출구 반대편)에서 떴습니다.
| 항목 | 교환 직전 | 직후 | 24시간 후 | 직전→직후 변화 | 직후→24h 변화 |
| 수온(℃) | 25.6 | 25.1 | 25.3 | −0.5 | +0.2 |
| pH | 7.22 | 7.29 | 7.19 | +0.07 | −0.10 |
| TDS(ppm) | 226 | 186 | 191 | −40 | +5 |
| 질산염(mg/L) | 20 | 10 | 10 | −10 | 0 |
6. 내 측정값을 외부 기준과 나란히 놓으면 아래 기준값은 전부 문헌값입니다.
내 측정값이 아니며, 출처를 확인할 수 있는 값만 실었습니다.
- 외부 참고 기준값
|
항목 |
외부 기준값(원문) |
출처 |
해석 주의 |
|---|---|---|---|
| 비이온화 암모니아(UIA) | 0.05 mg/L 초과 시 어류 조직 손상 가능, 2.0 mg/L에서 민감종은 통상 폐사 | UF/IFAS FA031 | 총암모니아(TAN)가 아닌 비이온화분 기준. pH·수온에 따라 비율 변화 |
| 암모니아 독성(신수조) | 비이온화 암모니아 > 1 mg/L, pH > 8 | MSD Veterinary Manual | 조건부 값. pH가 낮으면 같은 TAN도 독성 비율이 낮음 |
| 아질산염 | NO₂ > 0.1 mg/L | MSD Veterinary Manual | 담수·저염화물 조건 |
| 질산염 | NO₃-N 70 mg/L | MSD Veterinary Manual | 급성 중독 임계값. NO₃와 단위 환산 필요 |
| 총경도 | < 20 mg/L이면 미네랄 부족 | MSD Veterinary Manual | 증류수 사용 시 발생 |
| CO₂ | > 40 mg/L | MSD Veterinary Manual | 초과 시 표층 무기력 |
| 네온테트라 | 수온 21–25℃, pH 4.0–7.5, 경도 18–215 ppm | SeriouslyFish | 해당 도감 페이지가 제시한 사육수 조건 |
| 코리도라스(브론즈 코리) | 수온 21–27℃, pH 6.0–8.0, 경도 36–268 ppm | SeriouslyFish | 해당 도감 페이지가 제시한 사육수 조건 |
| 체리새우 | 확인 불가 — SeriouslyFish 도감 미등재 | — | 커뮤니티 권장치 인용 시 반드시 '비공식' 표기 |
7. 이 기록으로 정한 내 수조 규칙
1) 측정 주기 : 주 7회 / 물교환 전후 포함로 고정. 원장을 7일 이상 이어져야 변동 폭을 읽을 수 있었습니다.
2) 물교환 판단선 — 일률 수치 대신 내 원장의 상승 폭·교환 후 하락 폭을 기준으로 질산염 20 mg/L / TDS 230 ppm일 때 교환하기로 정했습니다.
3) 재측정 신호 — 값이 평소 변동 폭을 벗어나면 바로 판단하지 않고, 조건 6가지를 점검한 뒤 24시간 뒤 같은 조건으로 재측정합니다.
8. 이 방법의 한계
솔직하게 적습니다.
첫째, 액체 키트·TDS 미터의 정밀도 한계가 있습니다. 최소 눈금 사이의 값은 어디까지나 추정이고, 색 카드 단계로만 판독됩니다. 둘째, 색 판독의 주관성입니다. 같은 시험관을 제가 아침에 보는 것과 밤에 보는 것도 달랐고, 사진 6처럼 판독 장면을 그대로 올리는 게 정직하다고 판단했습니다.
셋째, 단일 수조·단기간 기록이라는 점입니다. 7일치가 30L 수조 하나의 흐름일 뿐, 다른 수조나 계절로 확장되는 결론이 아닙니다.
9. 자주 묻는 질문
Q1. pH가 매일 조금씩 다른데 정상인가요?
저는 '정상/비정상' 판정 대신 하루 중 어느 시점에 높았는지를 기록했습니다. 표 5를 보시면 점등 후 광합성이 시작되면서 pH가 올라가는 방향이 제 수조에서 그대로 나옵니다. 어종별 적정 pH는 위 표 7의 출처 페이지에서 확인하시길 권합니다.
Q2. TDS 수치는 무엇을 의미하나요?
TDS는 물에 녹아 있는 고형물의 총합이라 성분 구분이 불가능합니다. GH·KH와는 다른 지표이며, TDS 수치만으로 경도나 안전성을 판단할 수 없다는 점을 먼저 말씀드립니다.
Q3. 액체 시약과 스트립 중 어느 쪽을 써야 하나요?
저는 두 제품을 같은 시료로 비교 측정하지 않았습니다. 판독 방식이 다르다는 것(액체는 색 카드 대조, 스트립은 패드 색 대조)까지는 설명할 수 있지만 우열은 단정할 수 없습니다.
Q4. 암모니아가 0으로 나오면 안전한가요?
키트에 뜨는 값은 대부분 총암모니아(TAN)이고, 실제 독성은 비이온화 암모니아(UIA)가 기준입니다. UF/IFAS는 UIA가 0.05 mg/L을 넘으면 조직 손상이 가능하다고 설명하며, 같은 TAN이라도 pH·수온에 따라 UIA 비율이 달라집니다. 제 수조는 측정 시점에 pH [O.O]·수온 [O]℃였습니다.
Q5. 질산염은 몇 ppm에서 갈아야 하나요?
일률 수치를 제시하지 않겠습니다. 저는 내 원장의 상승 폭과 물교환 후 하락 폭으로 내 수조의 판단선을 계산했습니다. 외부 문헌의 NO₃-N 70 mg/L는 급성 중독 기준이라 일상 판단선과 성격이 다릅니다.
Q6. 물교환 직후 pH가 왜 달라지나요?
교환수의 pH·KH 차이가 가능 원인입니다. 표 6의 세 시점 값을 보시면 24시간 내 [원복됐다/원복되지 않았다 — 기록 기입] 부분까지는 제 기록으로 보여드릴 수 있지만, 단정적인 원인 규정은 피하겠습니다.
Q7. 측정할 때마다 값이 다른 이유는?
1장의 세 원인(시각·위치·시약 상태)으로 회수됩니다. 가장 설득력 있는 방법은 조건을 어긴 날과 지킨 날의 값을 나란히 놓아보는 것인데, 제 원장에서도 [O]일차와 [O]일차가 그 사례입니다.
Q8. 이 기록을 제 어항에 그대로 적용해도 되나요?
용량·어종·개체수·여과·수초량·급이량에 따라 수치는 모두 달라집니다. 방법(프로토콜)은 이식 가능하지만 수치는 이식 불가가 제 결론이며, 이 글은 수의학적 진단·처방이 아닙니다.
마무리 : 함께 보시면 좋은 글도 남깁니다.
- 226번 글 나노 수조 물교환 주기: 매주 20% vs 격주 30% 8주 실험 : 측정을 처음 시작하는 사람이 이 글보다 그쪽을 먼저 읽는 편이 낫습니다.
- 209번 글 나노 수조에서 채소는 몇 시간부 오염원이 될까
- 207번 글 나노피쉬 사료 성분표 보는 법 : 수조 사양이나 어종·개체수를 정리한 글이므로 표 1(수조 A·B·C 사양)의 배경 설명이 되어 줍니다.
참고자료
- UF/IFAS Extension, "Ammonia in Aquatic Systems" (FA031) — https://edis.ifas.ufl.edu/publication/FA031
- SeriouslyFish, "Paracheirodon innesi" — https://www.seriouslyfish.com/species/paracheirodon-innesi/
- SeriouslyFish, "Corydoras aeneus" — https://www.seriouslyfish.com/species/corydoras-aeneus/
- MSD Veterinary Manual, Water Quality Requirements —https://www.msdvetmanual.com/
최종 수정일: [2026. 10. 27] · 본 글의 측정 기록은 필자 수조 기준이며 수의학적 진단·처방을 대체하지 않습니다.